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試劑盒簡介：
本試劑盒采用特定的細胞裂解緩沖液系統，可快速有效的提取血液總DNA(包括血液、血清、血漿等）。
整個DNA提取過程中無需使用苯酚和氯仿等有毒試劑，且能在30分鐘左右完成提取過程。提取的DNA可直接用于PCR、southern blotting等下游實驗。
實驗流程圖（資源處可下載）：
部分實驗案例：
上一個：
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常見問題
一：RNA樣本篩選及儲存要點概述
RNA在細胞內極易降解，樣本選擇時一定要選取新鮮的樣本組織或者取樣后迅速低溫處理（液氮速凍）；樣本出現多次反復凍融后，RNA得率會嚴重下降，也會導致RNA降解；RNA提取環境要保持無RNA酶污染；
一：(DNA)植物樣本處理量不確定問題的解決方案
對于植物樣本，樣本處理量無法統一確定，對于一般樣本（煙草，擬南芥等），提取量不超過100mg鮮重組織或者20mg干重組織，對于復雜樣本（水稻，玉米，榆樹等），建議初始樣本量不超過50mg鮮重或者10mg干重組織；如果需要較高的DNA量，可以采取多管濃縮的方法提取DNA;
二：(DNA)如何處理短時間內無法低溫處理的DNA樣本？
對于植物樣本，如果短時間不能低溫處理，建議使用硅膠顆粒干燥樣本，防止DNA嚴重降解；研磨處理材料過程中盡量不要過量，否則會導致DNA產量低；材料過量也會使樣本出現團塊無法裂解，導致離心柱堵塞，無法獲得高質量DNA;
三：DNA提取中A260/280比值波動是什么原因
對于基因組DNA提取，A260/280值如果低于1.7說明有可能存在蛋白污染，如果值大于1.9，說明可能存在RNA污染；如果洗脫樣本時沒有使用Buffer EB，而使用ddH20，比值或偏低，因為Ph值會影響吸光值，并不表示樣本純度低；
四：(DNA)離心柱漂洗完成后需要注意什么
離心柱漂洗完成后，盡可能烘干柱膜上殘留乙醇，殘留乙醇會影響洗脫效率和下游實驗效果；如果A260/230值過低，說明樣本提取過程中，漂洗不徹底，有鹽離子殘留，建議增加漂洗次數；
五：(DNA)試劑盒中Buffer EB含微量EDTA怎樣處理
試劑盒中Buffer EB中含有少量EDTA，可能影響下游實驗，使用時適當稀釋，如果用其他洗脫液洗脫，要確保PH>7.5，PH過低影響洗脫效率。
七：血液樣本DNA提取注意事項
對于血液樣本，最好使用新鮮血液樣本或者4℃存放少于2天的樣本，否則會嚴重降低DNA產量；盡量避免反復凍融（不超過3-5次），每一次凍融都會降低DNA得率；
如果樣本中含有血塊，說明樣本收集時未加入血液抗凝劑；建議重新收集樣本并加入EDTA，肝素，檸檬酸等抗凝；在使用紅細胞裂解液處理血液時，確保血液樣本已經恢復到室溫狀態；處理過程中盡可能混勻樣本，防止紅細胞裂解不完全；
八：植物樣本DNA提取注意事項（一）
對于植物樣本，樣本處理量無法統一確定，對于一般樣本（煙草，擬南芥等），提取量不超過100mg鮮重組織或者20mg干重組織，對于復雜樣本（水稻，玉米，榆樹等），建議初始樣本量不超過50mg鮮重或者10mg干重組織；如果需要較高的DNA量，可以采取多管濃縮的方法提取DNA;
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